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Med Sci (Paris). 2011 December; 27(12): 1097–1105.
Published online 2011 December 23. doi: 10.1051/medsci/20112712016.

ADAMTS13, la protéase spécifique du clivage du facteur von Willebrand

Agnès Veyradier1,2,3* and Paul Coppo3,4

1Service ­d’hématologie biologique, hôpital Antoine Béclère, groupe hospitalier Paris-Sud, AP-HP, 157, rue de la Porte de Trivaux, 92140Clamart, France
2Inserm U770, Université Paris-Sud, 80, rue du Général Leclerc, 94276Le Kremlin-Bicêtre, France
3Centre national de référence des microangiopathies thrombotiques de l’adulte et de l’enfant (CNR-MAT), Paris, France
4Département ­d’hématologie clinique, hôpital Saint-Antoine, groupe hospitalier Paris-Est, AP-HP, 184, rue du Faubourg Saint-Antoine, 75012Paris
Corresponding author.
 

L’hémostase correspond aux différents mécanismes mis en jeu pour réparer une brèche vasculaire. Une première étape, l’hémostase primaire, correspond à la formation du clou plaquettaire puis une seconde étape, la coagulation, aboutit à la formation du caillot de fibrine. Le facteur von Willebrand (VWF) est une glycoprotéine plasmatique qui joue un rôle clé dans ­l’hémostase primaire puisqu’il est indispensable à l’adhésion des plaquettes au sous-endothélium mis à nu par la brèche vasculaire et à l’agrégation des plaquettes entre elles à taux de cisaillement élevés du flux sanguin (représentatifs de la microcirculation sanguine) [ 1]. Le VWF est synthétisé dans les cellules endothéliales et dans les mégacaryocytes et stocké dans des compartiments cellulaires à partir desquels il est secrété dans le plasma. La particularité du VWF est d’avoir une structure multimérique organisée en association de dimères (eux-mêmes constitués de l’association de deux monomères dont la masse moléculaire est de l’ordre de 250 kDa) : le plus petit multimère est un dimère de 500 kDa et les plus grands multimères peuvent atteindre 30 000 kDa. Cette organisation multimérique a une conséquence directe sur la fonction du VWF puisque son pouvoir adhésif vis-à-vis du sous-endothélium et des plaquettes est proportionnel à la taille du multimère. Dans le plasma circule un éventail de multimères du VWF de différentes tailles, classés en 3 groupes : les bas PM, les PM intermédiaires et les hauts PM (HPM). Dans les compartiments cellulaires, il existe en plus des multimères de très hauts PM (THPM) du VWF qui ne sont pas retrouvés dans le plasma dans les conditions physiologiques. La régulation de la taille des multimères de VWF dans le plasma repose essentiellement sur l’action d’une protéase, ADAMTS13 (A disintegrin and metalloprotease with thrombospondin type 1 repeats, 13e membre), spécifique du clivage du VWF [1]. Cette régulation est cruciale pour prévenir la formation de thrombus plaquettaires au sein de la microcirculation sanguine.

ADAMTS13 : biosynthèse, structure, propriétés biochimiques, fonction
Gène et précurseur protéique d’ADAMTS13
Le gène codant pour ADAMTS13 a été identifié grâce simultanément au séquençage de l’extrémité amino-terminale de la protéine [ 2– 4] et à une stratégie de clonage positionnel [ 5] conduisant ainsi à la découverte du 13e membre de la famille ADAMTS dont une vingtaine de membres sont identifiés (Figure 1). Le gène codant pour ADAMTS13 (ADAMTS13) est localisé sur le chromosome 9q34 et s’étend sur 37 kb incluant 29 exons. L’ARNm complet comprend 4,6 kb, mais il existe un épissage alternatif du gène conduisant à plusieurs variants dont la signification demeure inconnue. ADAMTS13 est synthétisée principalement par les cellules stellaires périsinusoïdales (ou cellules de Ito siégeant entre les hépatocytes et les cellules endothéliales) du foie [ 6] mais aussi par les cellules endothéliales [ 7] et les cellules de la lignée mégacaryocytaire [ 8]. Elle est secrétée dans le plasma sous forme d’une enzyme active d’environ 200 kDa.

La pré-pro-ADAMTS13 est une monochaîne de 1427 acides aminés (aa), schématisée dans la Figure 2 , qui comprend un domaine ­amino-terminal caractéristique des protéines de la famille et une ­combinaison spécifique carboxy-­terminale [ 3].

Importance des conditions hémodynamiques pour l’activité d’ADAMTS13
Les principales propriétés biochimiques d’ADAMTS13 ont pu être déterminées dès 1996 grâce à sa purification partielle à partir de plasma humain [ 9, 10]. ADAMTS13 est différente des métalloprotéases matricielles ou des sérine-protéases plasmatiques puisque les inhibiteurs habituels de celles-ci n’ont aucun effet sur sa propre activité enzymatique in vitro. Son spectre d’action apparaît étroit puisqu’elle ne dégrade ni le fibrinogène, ni l’albumine, ni le collagène. En revanche, elle hydrolyse spécifiquement le VWF (dans un domaine dit A2) par scission du pont peptidique Tyr1605-Met1606. In vitro, son activité enzymatique est potentialisée par les cations divalents (en particulier le Ba2+) et par un pH optimum compris entre 8 et 9 ; elle est bloquée en présence d’EDTA. Sa concentration plasmatique est de l’ordre de 1 µg/ml. Sa demi-vie dans le plasma, comprise entre 2 et 3 jours, est inhabituellement longue pour une protéase [ 11] ce qui suggère l’existence, en plus de sa forme soluble plasmatique, d’une forme liée à un récepteur cellulaire et/ou à un transporteur plasmatique qui n’est pas encore identifié. La seule fonction d’ADAMTS13 connue à ce jour est de cliver spécifiquement les multimères plasmatiques du VWF afin d’en limiter la taille et ainsi le pouvoir adhésif vis-à-vis des plaquettes.

La régulation de l’activité d’ADAMTS13 sur le VWF fait intervenir des propriétés intrinsèques au VWF qui dépendent très directement des conditions hémodynamiques. En effet, la modélisation du domaine A2 du VWF suggère que le pont peptidique Tyr 1605-Met1606, qui constitue le site spécifique de clivage par ADAMTS13, est cryptique au sein de la molécule de VWF native [ 12]. Ainsi, seul le dépliement du VWF induit soit par les forces de cisaillement élevées du flux sanguin dans les microvaisseaux in vivo, soit par des agents dénaturants (urée, hydrochlorure de guanidine), ou son immobilisation sur une surface plastique [ 13] in vitro, permet l’exposition de ce pont peptidique et le rend donc accessible au clivage par ADAMTS13. De plus, cet accès est facilité par la liaison du VWF à certains ligands comme la P-­sélectine (qui intervient dans la fixation du VWF à la surface des cellules endothéliales à la phase initiale de sa sécrétion dans le plasma [ 14]) ou la glycoprotéine Ib plaquettaire (qui permet la liaison du VWF aux plaquettes au sein du clou plaquettaire formé pour réparer une brèche vasculaire [ 15]). Ceci explique pourquoi le rôle d’ADAMTS13 dans la régulation de la taille des multimères du VWF est prédominant dès l’étape de sécrétion du VWF par les cellules endothéliales (limitation immédiate de la taille des multimères avant la mise en circulation du VWF dans le plasma) et aussi au sein du clou plaquettaire (résorption du clou plaquettaire une fois la brèche ­vasculaire réparée) (Figure 3) [14, 15].

Domaines protéiques d’ADAMTS13 et interactions avec le VWF
Les sites précis de liaison entre le VWF et ADAMTS13 restent à identifier, tant sur le substrat que sur l’enzyme, de même que la séquence précise des interactions lors du processus de reconnaissance du substrat par l’enzyme. Des indications sont néanmoins disponibles grâce à une approche reposant essentiellement sur des expériences de liaison de protéines tronquées in vitro soit en conditions statiques, soit en conditions de flux (Figure 2). Le clivage du propeptide d’ADAMTS13 n’apparaît pas indispensable à son activité enzymatique [ 16]. Son domaine catalytique seul (métalloprotéase) ne suffit pas à assurer son activité enzymatique vis-à-vis du VWF, activité qui requiert la ­présence additionnelle du domaine riche en cystéines et du domaine spacer [ 17]. En revanche, les domaines thrombospondine de type 1 (TSP1) 2-8 et les domaines CUB1 ne sont pas indispensables au ­clivage du VWF in vitro mais ils joueraient un rôle essentiel et coopératif dans le phénomène de reconnaissance du substrat [ 18]. En effet, ils pourraient permettre à ADAMTS13 de se fixer in vivo aux cellules endothéliales (le CD36 endothélial est un récepteur candidat [ 19]) ou aux plaquettes par son extrémité carboxy-terminale, cet ancrage cellulaire pouvant alors être un prérequis pour son interaction avec le VWF (Figure 3). L’interaction directe entre ADAMTS13 et le VWF impliquerait séquentiellement une liaison entre la séquence allant du TSP1 5 au CUB2 d’ADAMTS13 et les domaines D4-CK du VWF [ 20], une liaison entre le domaine CUB1 d’ADAMTS13 et le domaine A3 du VWF [ 21] puis une liaison entre les domaines riche en cystéines et spacer d’ADAMTS13 et le domaine A2 du VWF [ 22].
Exploration biologique d’ADAMTS13

En 2011, l’exploration biologique d’ADAMTS13 repose sur des tests phénotypiques plasmatiques (ou sériques) limités à la mesure de son activité protéolytique ­vis-à-vis du VWF et à celle de son antigène, ainsi qu’à son étude génétique par séquençage direct de son gène.

Depuis 1998, plusieurs méthodes de mesure de l’activité d’ADAMTS13 ont été développées. Toutes ces méthodes relèvent du statut d’examens hyperspécialisés récemment transférés de la recherche et non du statut d’examens spécialisés pouvant être validés en routine. En corollaire, ces examens, qui restent extrêmement ­coûteux et dont l’interprétation est souvent complexe, sont centralisés dans des laboratoires experts. Les méthodes de mesure de l’activité d’ADAMTS13 sont basées sur la dégradation d’un substrat exogène par l’ADAMTS13 du plasma testé [ 23, 24]. Ce substrat est soit du VWF natif (molécule entière, VWF full-length) purifié à partir de plasma humain ou recombinant, soit de courts peptides synthétiques de VWF (substrat minimal pour ADAMTS13 composé d’une séquence de quelques aa incluant le site de clivage par ADAMTS13). Les produits de dégradation du VWF sont mesurés soit par électrophorèse, soit par des techniques immunologiques, soit par des techniques d’agrégation plaquettaire [23, 24]. Quelle que soit la méthode utilisée, les normes de l’activité d’ADAMTS13 se situent entre 50 et 150 % (exprimées par rapport à un mélange de plasmas normaux).

Les sensibilité, spécificité, linéarité et précision de ces différentes méthodes ont été comparées dans différentes études multicentriques [ 25, 26]. De manière synthétique, il apparaît que toutes les méthodes de mesure de l’activité d’ADAMTS13 ont le plus souvent un seuil de détection situé entre 5% et 10 %, et que leur sensibilité et leur spécificité sont excellentes dans la zone de pertinence clinique (déficit fonctionnel sévère d’ADAMTS13 défini par une activité inférieure à 10 %) pour le diagnostic positif de purpura thrombotique thrombocytopénique (PTT) (voir ci-après). Dans la zone des déficits partiels en ADAMTS13 (entre 15 % et 50 %) dont la pertinence clinique n’est pas établie, il existe une assez grande variabilité inter-­méthodes alors que, pour des valeurs normales supérieures à 50 %, les méthodes sont assez bien corrélées. Un certain nombre de coffrets commerciaux sont ­disponibles depuis quelques années sur le marché, mais leur performance n’a pas encore été évaluée par rapport aux techniques de ­référence dans le cadre d’études ­multicentriques.

Plusieurs tests (ELISA utilisant des anticorps [Ac] anti-ADAMTS13 polyclononaux ou monoclonaux, avec détection chromogénique ou Western blot) dédiés à la mesure de l’antigène ADAMTS13 sont disponibles. Les normes des taux d’antigène ADAMTS13 plasmatique sont comprises entre 700 et 1 400 ng/ml. En raison des différents mécanismes pouvant conduire à un déficit fonctionnel sévère d’ADAMTS13 (voir ci-après), la valeur du taux d’antigène ADAMTS13 n’est le plus souvent pas corrélée à l’activité d’ADAMTS13 ; par conséquent, c’est un paramètre de faible intérêt dans l’exploration biologique du PTT.

L’étude génétique d’ADAMTS13 repose sur un séquençage exhaustif des 29 exons et des jonctions exon-­intron du gène ADAMTS13 puisqu’il n’existe pas de sites préférentiels de mutations dans le PTT héréditaire (syndrome d’Upshaw-Schulman), seule pathologie liée à un défaut génétique d’ADAMTS13 (voir plus loin).

Variations physiologiques et pathologiques de l’activité d’ADAMTS13

Les conditions physiologiques qui semblent influencer ADAMTS13 sont les âges extrêmes de la vie et la grossesse [1, 27]. Ces conditions ont en commun une augmentation physiologique des taux de VWF et il apparaît donc que l’activité circulante d’ADAMTS13 varie en sens inverse du taux de VWF plasmatique [27]. Chez les nouveau-nés et les sujets âgés, l’activité d’ADAMTS13 apparaît discrètement diminuée [27, 28] d’environ 10 à 20 % par rapport à la population générale. Au cours de la grossesse, l’activité d’ADAMTS13 diminue progressivement à partir de la 12e semaine d’aménorrhée pour atteindre, à terme, des taux 15 % à 20 % inférieurs au taux de base [ 29]. Des variations ethniques ont également été décrites : les sujets noirs ont des taux d’ADAMTS13 plus bas et cela serait dû à leur taux de VWF ­physiologiquement plus élevé [1].

Déficits fonctionnels partiels en ADAMTS13
Les déficits fonctionnels partiels en ADAMTS13 sont définis par des activités comprises entre 20 et 50 %. Contrairement au déficit sévère qui est ­pathognomonique du PTT (voir ci-après), ils ne sont pas spécifiques puisque retrouvés dans de nombreuses pathologies : pathologies cardiovasculaires, sepsis sévère, accès palustre, syndrome des antiphospholipides, certaines microangiopathies thrombotiques (MAT) comme le HELLP syndrome (hemolysis elevated liver enzymes low platelet count) ou le syndrome hémolytique et urémique [ 30]. Dans environ 10 % des cas, des tableaux cliniques de PTT peuvent également s’accompagner d’une activité d’ADAMTS13 subnormale ; le plus souvent, ces PTT surviennent dans un contexte de cancer, de pathologie liée au VIH (virus de l’immunodéficience humaine) ou de greffe [30].

Quelle que soit la pathologie concernée, la pertinence clinique de ces déficits partiels en ADAMTS13 n’est pas clarifiée. Les mécanismes de ces déficits fonctionnels partiels en ADAMTS13 sont multiples : diminution de la synthèse et/ou de la sécrétion d’ADAMTS13 liée à une dysfonction de l’endothélium, consommation de l’enzyme par un excès de substrat, inhibition d’ADAMTS13 par certaines cytokines pro-inflammatoires comme l’IL6, dégradation d’ADAMTS13 par des enzymes protéolytiques (thrombine, élastases leucocytaires, plasmine) [30].

Déficit fonctionnel sévère en ADAMTS13 : le purpura thrombotique thrombocytopénique
Le déficit fonctionnel sévère en ADAMTS13 (activité < 10 %) est pathognomonique d’une forme particulière de microangiopathie thrombotique appelée PTT [1, 30]. Le PTT est défini par la formation spontanée dans la microcirculation sanguine de thrombus plaquettaires responsables d’une anémie hémolytique mécanique (cassure des globules rouges sur les thrombus intravasculaires produisant des schizocytes), d’une thrombopénie de consommation et de signes d’ischémie multiviscérale touchant principalement le cerveau et le rein. Il s’agit d’une maladie rare dont l’incidence est estimée à quatre cas pour un million d’habitants et par an. À l’exception des rarissimes formes à révélation pédiatrique, le PTT touche principalement l’adulte jeune de 30 à 40 ans avec une prédominance féminine (2F/1H). Le PTT évolue classiquement par poussées entrecoupées de périodes de rémission clinique. L’intensité du tableau clinique lors d’une poussée est très hétérogène allant de formes frustes (thrombopénie isolée) jusqu’à des formes gravissimes de défaillance multiviscérale ischémique ; de même, la fréquence des poussées est très variable (sporadiques ou au contraire récurrentes jusqu’à la chronicité) et reste imprévisible. Dans plus de 50 % des cas, le PTT est idiopathique ; dans les autres cas, il survient dans un contexte clinique plus large, associé à d’autres affections (maladie auto-immune, infection, grossesse, médicaments, cancer, greffe d’organe…). Les facteurs ­déclenchant les poussées sont multiples (infection, grossesse, certains médicaments comme les thiénopyridines) et restent souvent non identifiés. Le diagnostic du PTT est parfois difficile à établir en raison de l’absence de spécificité de ses signes clinico-biologiques et ses diagnostics différentiels sont donc nombreux. En l’absence de traitement urgent et adapté dont le prérequis est bien entendu un diagnostic précis, les poussées de PTT ont un pronostic très sévère conduisant au décès dans 90 % des cas. Depuis 1990, l’utilisation empirique de la plasmathérapie (idéalement échanges plasmatiques) a révolutionné le pronostic des poussées de PTT en ­permettant un taux de survie de 90 % [1, 30].

Depuis sa première description clinique en 1924 [ 31], la physiopathologie du PTT est restée totalement obscure jusqu’en 1982, date à laquelle il a été rapporté que les thrombus plaquettaires présents de manière diffuse dans les microvaisseaux des patients atteints de PTT avaient la particularité d’être très riches en multimères de THPM du VWF [ 32]. Ce n’est que 15 ans plus tard, en 1997, lorsqu’ADAMTS13, la métalloprotéase responsable de la régulation de la taille des multimères du VWF, a été découverte, que la physiopathologie du PTT a pu être élucidée [30]. En effet, chez les patients atteints de PTT, il existe dans 90 % des cas un déficit fonctionnel sévère (activité inférieure à 10 %) d’ADAMTS13 qui entraîne l’accumulation anormale dans le plasma de multimères de THPM du VWF. Ce VWF « hyperadhésif » est responsable de la formation spontanée de thrombus plaquettaires qui vont obstruer la microcirculation sanguine et provoquer la poussée de PTT. Le déficit sévère en ADAMTS13 est le plus souvent acquis par le biais d’auto-Ac anti-ADAMTS13 (PTT acquis auto-immun représentant plus de 9 cas de PTT déficitaires en ADAMTS13 sur 10, initialement décrit sous le nom de syndrome de Moschovitz [31]) mais il peut être aussi héréditaire de transmission autosomique récessive (moins de 10 % des cas de PTT déficitaire en ADAMTS13) par le biais de mutations bialléliques du gène d’ADAMTS13 (maladie orpheline appelée syndrome d’Upshaw-Schulman) [5].

ADAMTS13, cible de l’auto-immunité : le modèle du PTT acquis idiopathique

Plus de 90 % des cas de PTT liés à un déficit fonctionnel sévère en ADAMTS13 correspondent à une maladie auto-immune à part entière due à l’apparition pathologique d’auto-Ac spécifiquement dirigés contre ADAMTS13 [ 33], qu’il s’agisse d’une forme idiopathique de PTT ou d’un PTT survenant dans un contexte clinique (notamment autre maladie autoimmune) préexistant. Ces auto-Ac anti-ADAMTS13 sont polyclonaux, ­reconnaissent constamment un ou plusieurs épitopes du domaine riche en cystéines d’ADAMTS13 [33]. Ils sont de type IgG dans près de 90 % des cas, beaucoup plus rarement de type IgM ou IgA mais alors toujours associés à la présence d’une IgG [ 34]. Au plan fonctionnel, deux types d’auto-Ac anti-ADAMTS13 ont été décrits [33, 34] : des Ac neutralisants (ou inhibiteurs) qui agissent par inhibition directe du site catalytique d’ADAMTS13 et des Ac non neutralisants qui agissent en se complexant à ADAMTS13 et accélèrent ainsi sa ­clairance. Ces deux mécanismes coexistent très souvent chez les patients atteints de PTT acquis. Les auto-Ac anti-ADAMTS13 peuvent donc être mesurés soit par des méthodes immunologiques (ELISA mettant en jeu de l’ADAMTS13 recombinante de type sauvage et une révélation par des Ac anti-IgG humaine), soit par des tests fonctionnels (mesure de l’activité résiduelle d’ADAMTS13 d’un mélange de plasma témoin et de plasma testé préchauffé à 56°C afin de dissocier d’éventuels complexes immuns) [34, 35]. Globalement, une IgG inhibitrice anti-ADAMTS13 est retrouvée dans près de 80 % des PTT acquis avec déficit fonctionnel sévère en ADAMTS13 lors des poussées [34, 35].

La pertinence clinique de ces autoAc anti-ADAMTS13 est clairement établie : ils sont responsables du déficit fonctionnel sévère en ADAMTS13 observé lors des poussées de PTT acquis [33–35] et ils disparaissent le plus souvent en rémission clinique après traitement (plasmathérapie éventuellement associée à un traitement immmunomodulateur) parallèlement à une normalisation de l’activité d’ADAMTS13 [34, 35]. Chez certains patients cependant, malgré la rémission clinique, ces auto-Ac persistent, et cela parallèlement à une activité d’ADAMTS13 qui reste indétectable [30, 34, 35]. Un certain nombre de questions restent néanmoins en suspens quant à la valeur pronostique de ces auto-Ac anti-ADAMTS13 dans le PTT acquis lié à un déficit fonctionnel sévère en ADAMTS13 : leurs caractéristiques (titre d’IgG, caractère inhibiteur…) corrèlent-elles avec l’intensité du tableau clinique inaugural, la réponse thérapeutique de la poussée ou encore la fréquence des rechutes ultérieures ? Plusieurs études prospectives ciblées sur les cohortes nationales de patients atteints de PTT lié à un déficit fonctionnel sévère en ADAMTS13 sont en cours afin de tenter de répondre à ces questions cruciales qui permettront peut-être d’utiliser les auto-Ac anti-ADAMTS13 comme marqueur pronostique et indicateur de choix thérapeutique à court et moyen termes. Au-delà du modèle de pathologie humaine, l’imputabilité du mécanisme Ac-dépendant dans le développement du PTT acquis a été récemment renforcée grâce à un modèle animal (babouin) chez lequel l’injection d’Ac monoclonaux murins anti-ADAMTS13 est capable d’induire un PTT [ 36]. Une autre question en suspens concerne les mécanismes à l’origine de la rupture de la tolérance du système immunitaire vis-à-vis d’ADAMTS13 : il semble exister des gènes de susceptibilité, notamment dans le système HLA [ 37] ; la présence de certaines mutations hétérozygotes d’ADAMTS13 est une autre piste prometteuse [ 38]. Enfin, de manière très intéressante, chez certains patients atteints de PTT acquis idiopathique, il semble que les auto-Ac anti-ADAMTS13 soient associés d’emblée ou précèdent de quelques mois (années) l’apparition d’autres auto-Ac notamment de facteurs anti-nucléaires [ 39].

ADAMTS13, cible de mutations génétiques : le modèle du PTT héréditaire ou syndrome d’Upshaw-Schulman

Moins de 10 % des cas de PTT liés à un déficit fonctionnel sévère en ADAMTS13 sont dus à des mutations bialléliques du gène codant ADAMTS13 (forme héréditaire du PTT appelée syndrome d’Upshaw-Schulman [USS]) [5]. Une centaine de mutations différentes d’ADAMTS13 sont recensées à ce jour dans la littérature internationale chez les patients atteints d’USS [ 40]. Alors que l’USS a une répartition mondiale ubiquitaire, il y a peu de mutations communes d’ADAMTS13 entre les différents pays du monde, certaines mutations étant intimement liées à certaines zones géographiques [30, 40]. Les mutations d’ADAMTS13 sont héritées selon une transmission autosomique récessive, les patients étant le plus souvent hétérozygotes composites ou plus rarement homozygotes (en particulier lorsqu’il existe une consanguinité familiale). Ces mutations sont réparties sur toute la longueur du gène sans hotspot (Figure 4). Il s’agit de mutations faux-sens (substitutions) dans 70 % des cas et de mutations de terminaison (codons stop, anomalies du site d’épissage, insertions, délétions partielles) dans 30 % des cas. Toutes les combinaisons possibles de mutations sont retrouvées chez les patients USS mais une délétion totale d’ADAMTS13 n’a jamais été décrite, ce qui suggère que celle-ci est probablement létale [5, 30, 40]. Dans la grande majorité des cas, le mécanisme du déficit fonctionnel sévère en ADAMTS13 induit par les mutations de son gène relève d’un déficit quantitatif lié à un défaut de synthèse et/ou de sécrétion de la protéine [30]. Étayer les relations phénotype/génotype dans le USS demeure très difficile en raison du faible nombre de patients, de la multiplicité des mutations et de l’hétérogénéité de l’expression clinique (âge de révélation de la maladie, sévérité et fréquence des poussées…), cela même au sein d’une famille donnée [30, 40]. Néanmoins, alors que la première poussée d’USS a lieu le plus souvent dans la petite enfance (souvent dès la naissance), de très rares formes se révèlent à l’âge adulte et semblent associées à une mutation particulière (R1060W) [38]. Parmi les autres facteurs susceptibles de moduler l’expression des mutations d’ADAMTS13 dans l’USS, citons certains polymorphismes d’ADAMTS13 [ 41] et aussi des gènes impliqués dans la régulation du taux de VWF plasmatique [ 42]. Cette implication du taux de VWF dans la susceptibilité au PTT sur un fond de déficit sévère en ADAMTS13 est clairement mise en évidence dans les modèles animaux de souris invalidées pour le gène d’ADAMTS13 où l’intensité de l’expression clinique du PTT est intimement corrélée au taux de VWF plasmatique circulant [ 43].

ADAMTS13, un outil thérapeutique ?

L’efficacité de la plasmathérapie utilisée initialement de manière empirique depuis 1990 dans le PTT est aujourd’hui clairement imputable à la présence d’ADAMTS13 active dans les produits plasmatiques utilisés dans cette indication [1, 30]. Depuis quelques années, la recherche pharmaceutique travaille au développement d’une ADAMTS13 purifiée à partir de plasma humain et d’une ADAMTS13 recombinante : ces produits ne sont pas encore disponibles mais quelques études préliminaires réalisées in vitro montrent des résultats prometteurs [ 44]. Une autre approche qui repose sur la thérapie génique a également été initiée chez l’animal permettant une restauration de taux sanguins d’ADAMTS13 détectables chez des souris invalidées pour le gène codant ADAMTS13 [ 45– 47].

Conclusion

Depuis les années 2000, la découverte d’ADAMTS13 a essentiellement permis une avancée médicale cruciale dans la compréhension de la physiopathologie, le diagnostic et le traitement d’une maladie rare, le PTT [ 48]. Plus récemment, le rôle d’ADAMTS13 dans la thrombose artérielle a été évoqué selon un concept qui souligne sa position de lien entre l’inflammation et la thrombose [ 49]. Au-delà du modèle « vertical » du PTT, cette dernière observation ouvre donc de nouveaux champs d’investigation pour la recherche dédiée à ADAMTS13, plus ­particulièrement ciblés sur les pathologies vasculaires [ 50].

Conflit d’intérêts

Les auteurs déclarent n’avoir aucun conflit d’intérêts concernant les données publiées dans cet article.

 
Footnotes
1 Domaine CUB : acronyme formé des initiales de trois protéines possédant ces ­domaines : complement (C1r/C1s), sea urchin EGF, bone morphogenetic protein.
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