Vignette (Photo © Inserm – Alice Lieury).
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Med Sci (Paris). 36(3): 243–252. doi: 10.1051/medsci/2020026.La sclérose en plaques et les médicaments
immuno-modulateurs des récepteurs de la sphingosine 1-phosphate 1Institut de pharmacologie et de biologie structurale, UMR
5089 CNRS, Université de Toulouse, 205 route de Narbonne, 31077Toulouse,
France Corresponding author. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Vignette (Photo © Inserm – Alice Lieury). | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
La sclérose en plaques (SEP) est une maladie auto-immune chronique très invalidante dont la prévalence est de 50 à 300 pour 100 000 individus, selon les régions du globe [1, 2]. On estime que 2 à 3 millions de personnes sont atteintes par cette maladie dans le monde, dont plus de 110 000 en France. Elle touche généralement de jeunes adultes, avec une prévalence de 3 patients femme pour un homme. Actuellement, les processus déclencheurs de la maladie ne sont pas connus. Néanmoins, des composantes génétiques mais aussi environnementales (ensoleillement et déficit en vitamine D) et sociales (telles que consommation de tabac) participent à la pathogenèse de la SEP [1]. La maladie est caractérisée par l’apparition de handicaps variables tous dus à l’infiltration progressive de cellules du système immunitaire adaptatif, les lymphocytes T et B, dans le système nerveux central (SNC). Ces cellules activées sont à l’origine de la destruction de la gaine de myéline des neurones et de l’apparition de dommages neuronaux et axonaux. On peut parfois observer la prolifération de cellules astrocytaires, ce qui peut conduire à des processus dichotomiques, en favorisant l’apparition de dommages supplémentaires, ou, au contraire, en contribuant aux phénomènes de réparation des lésions [3]. La SEP est une maladie auto-immune dont la progression est en relation directe avec le phénomène appelé « diversification antigénique » (epitope spreading). Dans plusieurs modèles murins de SEP, génétiques ou induits, la progression des dommages s’observe en effet en lien avec la présence de nouveaux épitopes qui sont reconnus par les anticorps produits par des lymphocytes B, et qui amplifie l’altération induite par les lymphocytes T spécifiques de séquences peptidiques présentées par les neurones [4]. On distingue trois types de SEP. Une forme cyclique ou rémittente (relapsing-remitting multiple sclerosis, SEP-RR), qui touche 80-85 % des patients, sans progression du handicap entre les poussées. Cette SEP peut évoluer en SEP secondairement progressive (ou SEP-SP). Pour plus de la moitié des malades, la SEP rémittente évolue vers la forme secondairement progressive en 15 à 20 ans [5]. Il existe également une forme primaire progressive (ou SEP-PP) atteignant environ 15 % des patients [1, 2]. Dans cette forme de SEP, les phases de la maladie ne sont pas entrecoupées de phases de rémission et la maladie progresse inexorablement. La transition entre la SEP rémittente et la forme progressive intervient lorsque les dommages axonaux ne sont plus compensés par les capacités reconstructrices du système nerveux central. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Les symptômes de la SEP sont caractérisés par des phases aiguës de déficits neurologiques en récidive. Ils dépendent des régions du système nerveux central qui sont atteintes, et du niveau de démyélinisation et d’inflammation présenté par ces zones. Ainsi, lorsque les lésions inflammatoires affectent le nerf optique, les symptômes sont une déficience visuelle et une douleur oculaire lors des mouvements des yeux. Dans cette névrite optique, l’action des cytokines inflammatoires et de l’oxyde nitrique, au niveau des lésions nerveuses du nerf optique, sont les déterminants majeurs des symptômes [1]. Les axones démyélinisés peuvent ainsi devenir hyperexcitables et générer spontanément la perception de lumière clignotante. C’est un ensemble de données cliniques, sérologiques et d’imagerie cérébrale qui permettent de poser le diagnostic. Pour la grande majorité des patients, la maladie débute par un épisode clinique isolé, régressant spontanément, qui implique le nerf optique, le tronc cérébral ou la moelle épinière. Les symptômes observés sont très hétérogènes et non spécifiques. Ils peuvent être uniques ou associés. On distingue différents symptômes cliniques [1] :
Ces troubles sont souvent associés à une fatigue importante et à des douleurs (neuropathique, névralgie du nerf trijumeau, musculosquelettique, migraine). En raison de la multiplicité des symptômes, il est essentiel de pouvoir éviter les erreurs de diagnostic qui peuvent avoir des conséquences importantes. Des critères de diagnostic, dits critères de McDonald, ont ainsi été développés et validés à partir des données cliniques de plusieurs centres académiques [6, 7]. Validés sur une population d’adultes de moins de 50 ans d’origine génétique/ethnique européenne occidentale, les critères de McDonald peuvent néanmoins être utilisés pour des populations d’origines géographiques diverses, chez des enfants et des individus plus âgés. Les signes cliniques qui sont observés chez les patients sont confrontés aux résultats d’imagerie par résonance magnétique nucléaire (IRM) cérébrale et à une analyse du liquide céphalo-rachidien (LCR). L’analyse par IRM permet de rechercher la présence de lésions cérébrales, de définir leur localisation (dissémination spatiale), le moment de leur apparition (dissémination temporelle). Ces études d’imagerie cérébrale ont un rôle fondamental en terme de diagnostic, mais aussi pour le pronostic et l’évaluation de la réponse au traitement [8]. L’analyse du liquide céphalo-rachidien permet, elle, la recherche (en western blot) de bandes oligoclonales d’immunoglobulines. Elle représente un bon outil diagnostic de la SEP (avec une présence de ces bandes d’immunoglobulines observées chez plus de 95 % des patients) qui permet de confirmer la sécrétion d’anticorps au niveau intra-thécal1. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Le système immunitaire est responsable de la SEP et l’infiltration de cellules immunitaires dans le système nerveux central (SNC) est une caractéristique de toutes les formes de SEP. Les traitements disponibles permettent de modifier, de limiter ou d’inhiber la migration de ces cellules afin de réduire toute nouvelle agression. Actuellement, il n’existe en fait pas de traitement curatif de la SEP et les stratégies thérapeutiques visent à traiter les poussées, à mettre en place des traitements de fond et à traiter les symptômes associés. Les poussées, qui sont caractérisées par des symptômes apparaissant de manière soudaine, sont des signes pathologiques. Elles peuvent régresser spontanément plus ou moins complètement. Ces crises inflammatoires, souvent très douloureuses, sont traitées à l’aide de perfusion de corticoïdes (Solumédrol®) par voie intraveineuse (flash ou bolus de corticoïdes)2. Pour des attaques sévères au cours desquelles la corticothérapie s’est révélée être inefficace ou contre-indiquée, des échanges de plasma ont parfois été réalisés afin de modifier la composition plasmatique du patient. Les traitements de fond sont assurés par des molécules immunomodulatrices. Mais en cas d’échecs du traitement, et pour les formes agressives ou résistantes, des immunosuppresseurs seront utilisés.
On distingue ainsi des traitements de 1re, 2e et 3e ligne qui seront administrés selon l’évolution de la maladie. Les traitements de 1re ligne
Traitements de 2e ligne
Traitements de 3e ligne
Les traitements par immunosuppresseurs La mitoxantrone (Novantrone®) est un agent intercalant de l’ADN et un inhibiteur
de la topoisomérase II. Elle est utilisée pour traiter les formes très sévères
de SEP, mais elle présente des effets secondaires très importants, car associés
au développement de cancers du sang. Le cyclophosphamide (Endoxan®) et le
mycophenolate mofétil (Ellcept®) sont également des immunosuppresseurs (hors
autorisation de mise sur le marché dans cette indication) qui permettent, dans
une certaine mesure, de stabiliser la maladie dans le temps. Tous deux
présentent des effets secondaires défavorables, en particulier digestifs, et
nécessitent une surveillance sanguine.Les traitements des symptômes associés Ces traitements sont nécessaires pour améliorer la qualité de vie des patients.
Ils incluent des médicaments antidouleurs, myorelaxants, antidépresseurs,
antifatigues, anticonvulsants, laxatifs, antidiarrhéiques, des médicaments pour
traiter les troubles urinaires, intestinaux et sexuels. Ils peuvent être
associés à des kinésithérapies, des thérapies comportementales, de la
méditation, etc. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Depuis la mise sur le marché du fingolimod (FTY720) en 2010 et 2011, par les agences de médecine américaine et européenne, la famille regroupant les cinq récepteurs de la sphingosine 1-phosphate (S1PR1-5) (Figure 1) est devenue une cible thérapeutique de choix dans le traitement de la SEP. Le fingolimod est un dérivé de la myriocine (Figure 2), une molécule immunosuppressive extraite du champignon Isaria sinclairii utilisé dans la pharmacopée chinoise. Cette molécule a d’abord été utilisée dans le cadre de rejets aigus de greffe de rein, mais sans dépasser les essais cliniques de phase III pour cette indication, en raison d’absence d’effets thérapeutiques supérieurs à la thérapie de référence, et de la survenue d’effets secondaires délétères. Dans la SEP, le fingolimod est utilisé à des doses dix fois inférieures à celles utilisées en transplantation rénale, ce qui réduit les risques d’effets secondaires. Il permet de diminuer le nombre de rechutes cliniques et augmente les délais d’apparition des évènements conduisant à l’invalidité dans les formes récurrentes de SEP. Dans les formes primaires progressives, le fingolimod n’a néanmoins pas montré d’avantages par rapport à un placebo [15].
Il s’agit d’une prodrogue qui est phosphorylée par la sphingosine kinase 2 (SphK2) en fingolimod-P ou FTY720-P, une molécule qui mime les effets d’un médiateur lipidique naturel, la sphingosine-1-phosphate (S1P). Immunomodulateur, son principal mode d’action repose sur son effet sur le trafic des lymphocytes [13] : il favorise leur rétention dans les organes lymphoïdes primaires et secondaires. L’inhibition de l’infiltration des lymphocytes dans le système nerveux central est ainsi une conséquence de leur rétention. Il agit en redistribuant de manière réversible les lymphocytes T et B de la circulation dans les organes lymphoïdes secondaires, tels que les ganglions lymphatiques périphériques et mésentériques et les plaques de Peyer (au niveau intestinal), provoquant un état de lymphopénie périphérique. Cette quasi absence de lymphocytes dans la circulation périphérique peut cependant avoir une conséquence délétère : le développement d’infections microbiennes opportunistes. Néanmoins, dans ce cas, l’arrêt du traitement permet une réactivation immédiate de la réponse immunitaire adaptative. La lymphopénie induite par le fingolimod ne correspond donc pas à une perte générale de lymphocytes dans tout l’organisme, contrairement à la véritable lymphopénie induite par irradiation ou traitement par l’alemtuzumab pour laquelle la restauration de l’immunité lymphocytaire nécessite une reconstitution du système immunitaire à partir des précurseurs cellulaires de la moelle osseuse. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Structuralement, une fois phosphorylé, le fingolimod est un analogue de la sphingosine 1-phosphate (S1P) (Figure 2). La principale source de S1P est constituée par les érythrocytes et les cellules endothéliales [16]. Dans le sang, elle est véhiculée sous forme combinée à des protéines de transport, telles que les HDL (high-density lipoprotein, ~ 60 %) et l’albumine (~ 30 %), et dans une moindre mesure aux VLDL (very low-density lipoprotein) et aux LDL (low-density lipoprotein) [17]. Sa liaison aux HDL se réalise via l’apolipoprotéine ApoM qui agit comme une protéine chaperonne, contrôlant ainsi les niveaux de S1P dans le sang. Sa concentration est de l’ordre du micromolaire dans le plasma. Elle est moins importante dans les liquides des compartiments tissulaires, ce qui explique le gradient de concentration existant entre le sang et les tissus. La SP1 se lie, avec de fortes affinités (nanomolaires) à la famille de récepteurs de la S1P, initialement nommée famille de gènes de différenciation endothéliale (EDG) des récepteurs lipidiques [18], qui compte cinq membres : S1PR1-5 (Figure 1). Ces cinq récepteurs partagent des similitudes de séquence et de structure génomique. Ils appartiennent à la superfamille des récepteurs couplés aux protéines G (RCPG) qui sont impliqués dans de nombreux processus biologiques clés, tels que l’odorat, le goût et la vision [19]. Selon le séquençage du génome humain, 60 % des 800 RCPG identifiés appartiennent aux récepteurs dits olfactifs ou sensoriels. Les 40 % restants sont classés dans les cinq familles principales du système GRAFS (glutamate, rhodopsine, adhésion, frizzled/taste2 et secrétine) [20]. Compte tenu de leur rôle dans de nombreux processus physiologiques et pathologiques, les RCPG sont devenus des cibles de choix pour le développement de nouveaux médicaments. Près de la moitié des médicaments commercialisés par l’industrie pharmaceutique ciblent en effet cette classe de récepteurs. Les récepteurs de la S1P font partie de la famille de la rhodopsine et sont couplés à différentes protéines G (Figure 1). Leur liaison à la S1P induit l’activation de voies de signalisation variées impliquées dans les phénomènes de survie, croissance, migration et différenciation cellulaire [21] (→). (→) Voir la Synthèse de O. Cuvillier, m/s n° 11, novembre 2012, page 951 Le récepteur S1PR1 a été initialement détecté dans les cellules endothéliales de la veine ombilicale (HUVEC) transformées par le phorbol 12-myristate 13-acétate (PMA). La voie de signalisation du S1PR1 comprend le couplage à la famille de protéines Gi/o et donc l’inhibition de l’adénylate cyclase (ou adénylyl cyclase), l’activation de la phosphoinositide 3-kinase et de la phospholipase C. Chez la souris, l’analyse des transcrits codant S1PR1 montre que ce récepteur est fortement exprimé dans le tissu adipeux, la rate, le poumon, le cerveau, le foie et le cœur, et faiblement dans le muscle squelettique, le thymus, l’utérus et les reins [22]. La délétion du gène S1pr1 dans la lignée germinale de souris entraîne la létalité in utero [23]. En fait, le récepteur S1PR1 joue un rôle vital dans le développement vasculaire et la létalité chez la souris est due à un défaut du développement des vaisseaux sanguins. S1PR1 a également une fonction essentielle dans la migration cellulaire, en particulier dans le drainage des lymphocytes T du thymus vers le sang et les structures lymphoïdes environnantes [24]. Plusieurs études ont révélé l’expression des récepteurs S1PR dans le système nerveux central [25], plus précisément à la surface des astrocytes chez l’homme, et dans l’endothélium chez l’homme et les rongeurs. Les récepteurs S1PR2–4 seraient, quant à eux, largement distribués et l’expression de S1PR5 serait restreinte au cerveau et aux lymphocytes T. La localisation de ces récepteurs reste toutefois difficile à déterminer, la production d’anticorps spécifiques n’étant pas aisée [26–28]. S1PR2 auquel ne se lie pas le fingolimod, est exprimé en particulier par les macrophages et les cellules progénitrices d’oligodendrocytes [29]. Chez la souris, l’inactivation du gène S1pr2 permet de réduire la démyélinisation et d’augmenter la remyélinisation dans un modèle murin de SEP [30]. Cet effet très positif est cependant contrebalancé par l’apparition de lymphomes à lymphocytes B [31]. S1PR5 est principalement exprimé dans la substance blanche tout au long du développement de la lignée des oligodendrocytes et dans les oligodendrocytes matures [32]. Il est aussi présent au niveau des capillaires cérébraux et son rôle dans la fonction de barrière endothéliale du cerveau a été suggéré [33]. La signalisation induite par S1PR5 comprend le couplage à des protéines Gi/o et G12/13. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Le traitement thérapeutique qui repose sur le fingolimod est associé à sa phosphorylation in vivo par la sphingosine kinase-2 qui produira le fingolimod-P (FTY720-P). Contrairement à la S1P, le fingolimod est principalement transporté dans le sang en association avec l’albumine. Le FTY720-P est un véritable agoniste car il a la capacité d’activer ses récepteurs et d’induire une cascade d’évènements cellulaires. C’est aussi un antagoniste fonctionnel. En effet, après sa liaison aux récepteurs présents à la surface des lymphocytes, le FTY720-P induit l’internalisation des récepteurs et leur dégradation dans les compartiments intracellulaires [34], dégradation qui ne serait pas compensée par leur néosynthèse. Le FTY720-P est un puissant activateur de l’ubiquitination du récepteur S1PR1. Cette modification, mise en évidence dans une étude réalisée sur les cellules 293 de rein embryonnaire humain (HEK) [35], entraîne une dégradation rapide et quantitative du récepteur. La capacité des agonistes pharmacologiques à induire la dégradation de S1PR1, mais aussi des autres récepteurs, pourrait ainsi expliquer leurs propriétés immunosuppressives : après leur internalisation et leur dégradation, leur absence de la membrane conduirait à l’impossibilité pour les lymphocytes activés de « sentir » le gradient de S1P et donc à leur séquestration dans le thymus et les organes lymphoïdes secondaires. L’activation des récepteurs par le FTY720-P permettrait également d’accroître le rôle de barrière des cellules endothéliales [36]. Bien que qualifiées de non spécifiques car activées par des concentrations très importantes de produit, de l’ordre du µM, des cibles intracellulaires ont aussi été décrites pour le fingolimod et le fingolimod-P. Le fingolimod inhibe en effet des enzymes clés du métabolisme du céramide [36], modulant ainsi les effets pro-inflammatoires de cette classe de molécules dans le cadre du traitement de la SEP. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Les effets secondaires [36] occasionnés par l’administration journalière de fingolimod ont incité l’industrie pharmaceutique à développer des principes actifs possédant un meilleur profil de sécurité, une meilleure sélectivité et une durée de vie pharmacocinétique réduite. Le fingolimod est associé à une diminution transitoire de la fréquence cardiaque (brady-arythmie) ainsi qu’à des retards de conduction auriculo-ventriculaire. De même, dans un modèle animal et sur cœur perfusé [37], il a été montré que le récepteur S1PR3 était impliqué dans la régulation du rythme cardiaque. Des effets indésirables cardiaques, dont des décès ont ainsi été rapportés chez des patients présentant déjà une maladie cardiaque. Des contre-indications ont donc été émises pour les patients ayant présenté, entre autres, un infarctus du myocarde ou une arythmie cardiaque sévère. Des molécules ayant une meilleure sélectivité que le fingolimod tout en gardant une voie d’administration orale ont été développées (Figure 2). Le ponesimod et l’amiselimod ciblent principalement les récepteurs S1PR1. D’autres molécules ciblent à la fois les récepteurs S1PR1 et S1PR5, telles le siponimod, l’ozanimod, le ceralifimod, le GSK2018682. Ces modulateurs ne ciblant pas S1PR3, les effets secondaires cardiaques pourraient être évités. L’activation de S1PR5 aurait également un effet neuroprotecteur sur les oligodendrocytes. Certaines de ces molécules ont une activité immunomodulatrice intrinsèque qui ne nécessite pas de phosphorylation in vivo comme le fingolimod, ce qui permet d’éviter les effets éventuels hors du contexte des récepteurs que présente le fingolimod. Le siponimod (Mayzent®) vient ainsi d’être autorisé par la Food and drug administration (FDA) américaine, dans le cadre du traitement de la SEP secondairement progressive, en plus de ses indications dans la SEP rémittente [5]. Une analyse de progression d’incapacité à 3 mois révèle que ce médicament permet de réduire de façon significative le risque de progression de la maladie. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Remyéliniser les axones La démyélinisation et les lésions axonales ont un rôle critique dans la survenue
des déficits neurologiques des patients atteints de SEP. Un processus naturel
permet la remyélinisation après l’apparition des dommages axonaux.
Malheureusement, ce processus ne permet pas de compenser les atteintes dues à la
progression des attaques auto-immunes. Les voies de recherche curative se
focalisent donc sur des éléments qui permettraient de stopper la démyélinisation
ou d’aider à la réparation ou à la régénération de la gaine de myéline [38].Des travaux sont ainsi en cours concernant le rôle des histones déacétylases (HDAC) dans la myélinisation des axones. La délétion du gène codant une HDAC (l’HDAC11) permet d’améliorer les symptômes cliniques dans l’encéphalomyélite auto-immune expérimentale (EAE), un modèle murin de SEP [39]. L’inhibition de l’expression de cette protéine aurait un effet positif sur la différenciation des cellules précurseurs d’oligodendrocytes et des cellules souches neuronales et donc aiderait à la reconstruction de la gaine de myéline. L’opicinumab®, un anticorps monoclonal spécifique de Lingo-1 (leucine-rich repeat and immunoglobulin-like domain-containing protein 1), une protéine extrêmement conservée présente au niveau de la gaine de myéline, a été testé [40]. Cet anticorps, qui inhibe Lingo-1, stimule la prolifération et la différenciation des cellules précurseurs d’oligodendrocytes que cette protéine bloque [40]. Chez l’animal, après administration de cet anticorps, on observe une moindre destruction des gaines de myéline, une meilleure préservation des fibres nerveuses, une atténuation des signes cliniques, et une remyélinisation plus efficace. Des essais cliniques ont été réalisés et une amélioration de la conduction du nerf optique a été observée dans la névrite optique [41]. Malheureusement, aucun effet n’a été obtenu dans la SEP rémittente [42]. Les essais cliniques se poursuivent en introduisant des critères d’inclusion mieux adaptés. La clémastine, un antagoniste antihistaminique des récepteurs H1 de l’histamine, a également montré des effets remyélinisants dans des modèles expérimentaux animaux. Chez des patients atteints de neuropathie optique chronique, on a pu observer une amélioration de leur état et des essais cliniques sont toujours en cours [43]. Les S1PR sont exprimés par de nombreuses cellules impliquées dans la myélinisation (cellules microgliales, oligodentrocytes, cellules progénitrices d’oligodendrocytes) [44]. Dans un modèle in vitro de démyélinisation induite chimiquement sur des cultures de sphéroïdes de télencéphale de rat, l’activation des S1PR par le fingolimod ou le siponimod permet d’augmenter l’expression des marqueurs de remyélinisation [45]. In vivo, dans un modèle murin, le fingolimod favorise la régénération nerveuse du nerf sciatique et, ex vivo, il stimule la production de myéline [46]. Cet effet de stimulation n’a cependant pas été confirmé dans le modèle animal d’induction de démyélinisation par la cuprizone [47], bien qu’un effet neuroprotecteur ait été observé, y compris avec le siponimod [48]. Les S1PR et leurs modulateurs, en développement, représentent ainsi un champ d’étude très intéressant dans un contexte protecteur, mais également stimulateur de myélinisation. La biotine (ou vitamine B7) à haute dose, c’est-à-dire à des concentrations mille fois supérieures à celles recommandées pour un sujet sain, permet de réduire les symptômes des SEP progressives primaires et secondaires. La biotine activerait des enzymes impliqués dans la biosynthèse de la myéline et dans la production d’énergie dans les axones démyélinisés [49]. Elle est actuellement délivrée par les pharmacies hospitalières à des patients déjà traités en attendant une demande formelle d’autorisation de mise sur le marché. Les thérapies fondées sur les cellules souches Initié il y a déjà une vingtaine d’années, le traitement de la SEP à l’aide de
cellules souches reste une voie encore prometteuse. Deux procédures ont été
décrites [50].La première fait appel à une immuno-ablation chimique à l’aide de cyclophosphamide et de rATG (une préparation d’immunoglobulines anti-thymocytes) [51, 52] suivie d’une transplantation autologue de cellules souches hématopoïétiques (aHSC). L’immuno-ablation par irradiation du corps entier n’est plus réalisée, en raison de toxicités sévères. Cette thérapie immuno-ablative, suivie d’une thérapie immuno-reconstitutive à l’aide de cellules hématopoïétiques, est considérée comme permettant au système immunitaire du patient de reprendre un état pré-pathologique. L’entrée en phase aplasique, caractérisée par un taux extrêmement bas de cellules hématopoïétiques dans le sang, nécessite l’administration en parallèle de traitements antiviraux et antibactériens. De nombreux essais cliniques ont été réalisés chez des patients présentant une SEP très active et réfractaire aux traitements pour lesquels cette thérapie a permis d’induire des rémissions et une amélioration de leur état [51–53]. L’efficacité et la sûreté des traitements sur le long terme nécessitent cependant encore d’être évaluées. La deuxième thérapie est également une thérapie cellulaire. Elle repose sur l’injection aux patients de cellules multipotentes possédant à la fois des propriétés immuno-modulatrices et régénératrices. Des études précliniques ont été réalisées à l’aide de cellules souches mésenchymateuses (MSC), neuronales (NSC), embryonnaires (hESC) ou pluripotentes inductibles (iPSC) [50]. Dans le modèle de souris présentant une encéphalomyélite auto-immune expérimentale (EAE), l’injection de MSC conduit à la diminution de l’infiltration des cellules immunitaires, de la démyélinisation et des dommages axonaux. Chez l’homme, de nombreuses études, réalisées dans des cohortes réduites, ont permis d’explorer la faisabilité et la sécurité de la transplantation de ces cellules. Leur injection à des patients s’est révélée avoir un bon profil de sécurité, mais une efficacité très variable [54]. Un essai clinique multicentrique de phase I/II, appelé MESEMS (mesenchymal stem cell for multiple sclerosis) actuellement en cours [55] devrait permettre d’évaluer avec certitude le profil de sécurité et l’efficacité de ce traitement. Les autres types de cellules souches sont l’objet de recherches qui sont essentiellement au stade préclinique avec quelques essais de sécurité chez l’homme [56]. Si peu d’effets secondaires défavorables ont été observés avec ces thérapies cellulaires, il existe néanmoins, sur le long terme, un risque non négligeable de transformation maligne. Les voies de recherche de traitements palliatifs et curatifs de la SEP sont prometteuses. Les causes de la démyélinisation sont multiples. Elles reposent sur les lymphocytes T, les lymphocytes B et la sécrétion d’anticorps, ainsi que sur la production de cytokines. La connaissance des mécanismes à l’origine de l’infiltration anormale des cellules immunitaires à travers la barrière immuno-encéphalique reste essentielle. La compréhension globale des phénomènes inflammatoires et immunitaires participant à la pathogenèse de la SEP permettra ainsi de traiter de manière durable et peut-être d’éviter l’apparition de la maladie. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Les auteurs déclarent n’avoir aucun lien d’intérêt concernant les données publiées dans cet article. | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
1.
Thompson
AJ,
Baranzini
SE,
Geurts
J, et al.
Multiple sclerosis . Lancet.
2018; ; 391 :
:1622.–1636. 2.
Zephir
H.. Progress in
understanding the pathophysiology of multiple sclerosis .
Rev Neurol (Paris).
2018; ; 174 :
:358.–363. 3.
Brambilla
R.. The contribution
of astrocytes to the neuroinflammatory response in multiple sclerosis and
experimental autoimmune encephalomyelitis . Acta
Neuropathol.
2019; ; 137 :
:757.–783. 4.
Cornaby
C,
Gibbons
L,
Mayhew
V, et al.
B cell epitope spreading: mechanisms and contribution to
autoimmune diseases . Immunol Lett.
2015; ; 163 :
:56.–68. 5.
Kappos
L,
Bar-Or
A,
Cree
BAC, et al.
Siponimod versus placebo in secondary progressive multiple
sclerosis (EXPAND): a double-blind, randomised, phase 3
study . Lancet.
2018; ; 391 :
:1263.–1273. 6.
Polman
CH,
Reingold
SC,
Banwell
B, et al.
Diagnostic criteria for multiple sclerosis: 2010 revisions to the
McDonald criteria . Ann Neurol.
2011; ; 69 :
:292.–302. 7.
Thompson
AJ,
Banwell
BL,
Barkhof
F, et al.
Diagnosis of multiple sclerosis: 2017 revisions of the McDonald
criteria . Lancet Neurol.
2018; ; 17 :
:162.–173. 8.
Cortese
R,
Collorone
S,
Ciccarelli
O,
Toosy
AT. Advances in
brain imaging in multiple sclerosis . Ther Adv Neurol
Disord.
2019; ; 12 :
:1756286419859722.. 9.
Weber
MS,
Hohlfeld
R,
Zamvil
SS. Mechanism of
action of glatiramer acetate in treatment of multiple
sclerosis . Neurotherapeutics.
2007; ; 4 :
:647.–653. 10.
Gelfand
JM,
Cree
BAC,
Hauser
SL. Ocrelizumab and
other CD20+ B-cell-depleting therapies in multiple
sclerosis . Neurotherapeutics.
2017; ; 14 :
:835.–841. 11.
Papeix
C,
Lubetzki
C. Anticorps
monoclonaux dans la sclérose en plaques . Med Sci
(Paris).
2009; ; 25 :
:1113.–1115. 12.
Brown
JWL,
Coles
A,
Horakova
D, et al.
Association of initial disease-modifying therapy with later
conversion to secondary progressive multiple sclerosis .
JAMA.
2019; ; 321 :
:175.–187. 13.
Rommer
PS,
Milo
R,
Han
MH, et al.
Immunological aspects of approved MS
therapeutics . Front Immunol.
2019; ; 10 : :1564.. 14.
Holmoy
T,
Fevang
B,
Olsen
DB, et al.
Adverse events with fatal outcome associated with alemtuzumab
treatment in multiple sclerosis . BMC Res
Notes.
2019; ; 12 : :497.. 15.
Lublin
F,
Miller
DH,
Freedman
MS, et al.
Oral fingolimod in primary progressive multiple sclerosis
(INFORMS): a phase 3, randomised, double-blind, placebo-controlled
trial . Lancet.
2016; ; 387 :
:1075.–1084. 16.
Gazit
SL,
Mariko
B,
Therond
P, et al.
Platelet and erythrocyte sources of S1P are redundant for
vascular development and homeostasis, but both rendered essential after
plasma S1P depletion in anaphylactic shock . Circ
Res.
2016; ; 119 :
:e110.–e126. 17.
Proia
RL,
Hla
T. Emerging biology
of sphingosine-1-phosphate: its role in pathogenesis and
therapy . J Clin Invest.
2015; ; 125 :
:1379.–1387. 18.
Blaho
VA,
Chun
J. Crystal clear?
Lysophospholipid receptor structure insights and
controversies . Trends Pharmacol Sci.
2018; ; 39 :
:953.–966. 19.
Sarramegna
V,
Muller
I,
Milon
A,
Talmont
F. Recombinant G
protein-coupled receptors from expression to renaturation: a challenge
towards structure . Cell Mol Life Sci.
2006; ; 63 :
:1149.–1164. 20.
Schioth
HB,
Fredriksson
R. The GRAFS
classification system of G-protein coupled receptors in comparative
perspective . Gen Comp Endocrinol.
2005; ; 142 :
:94.–101. 21.
Cuvillier
O.. Les récepteurs
de la sphingosine 1-phosphate : de la biologie à la
physiopathologie . Med Sci (Paris).
2012; ; 28 :
:951.–957. 22.
Alexander
SPH,
Christopoulos
A,
Davenport
AP, et al.
The concise guide to pharmacology 2019/20: G protein-coupled
receptors . Br J Pharmacol.
2019; ; 176 : (suppl 1)
:S21.–141. 23.
Liu
Y,
Wada
R,
Yamashita
T, et al.
Edg-1, the G protein-coupled receptor for
sphingosine-1-phosphate, is essential for vascular
maturation . J Clin Invest.
2000; ; 106 :
:951.–961. 24.
Schwab
SR,
Cyster
JG. Finding a way
out: lymphocyte egress from lymphoid organs . Nat
Immunol.
2007; ; 8 :
:1295.–1301. 25.
Healy
LM,
Antel
JP.
Sphingosine-1-phosphate receptors in the central nervous and
immune systems . Curr Drug Targets.
2016; ; 17 :
:1841.–1850. 26.
Talmont
F,
Mouledous
L. Evaluation of
commercial antibodies against human sphingosine-1-phosphate receptor
1 . Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol.
2014; ; 387 :
:427.–431. 27.
Talmont
F,
Mouledous
L,
Baranger
M, et al.
Development and characterization of sphingosine 1-phosphate
receptor 1 monoclonal antibody suitable for cell imaging and biochemical
studies of endogenous receptors . PLoS One.
2019; ; 14 :
:e0213203.. 28.
Talmont
F,
Mouledous
L,
Boue
J, et al.
Denatured G-protein coupled receptors as immunogens to generate
highly specific antibodies . PLoS One.
2012; ; 7 : :e46348.. 29.
Adada
M,
Canals
D,
Hannun
YA,
Obeid
LM.
Sphingosine-1-phosphate receptor 2 .
FEBS J.
2013; ; 280 :
:6354.–6366. 30.
Seyedsadr
MS,
Weinmann
O,
Amorim
A, et al.
Inactivation of sphingosine-1-phosphate receptor 2 (S1PR2)
decreases demyelination and enhances remyelination in animal models of
multiple sclerosis . Neurobiol Dis.
2019; ; 124 :
:189.–201. 31.
Cattoretti
G,
Mandelbaum
J,
Lee
N, et al.
Targeted disruption of the S1P2 sphingosine 1-phosphate receptor
gene leads to diffuse large B-cell lymphoma formation .
Cancer Res.
2009; ; 69 :
:8686.–8692. 32.
Jaillard
C,
Harrison
S,
Stankoff
B, et al.
Edg8/S1P5: an oligodendroglial receptor with dual function on
process retraction and cell survival . J
Neurosci.
2005; ; 25 :
:1459.–1469. 33.
Van Doorn
R, Lopes
Pinheiro
MA,
Kooij
G, et al.
Sphingosine 1-phosphate receptor 5 mediates the immune quiescence
of the human brain endothelial barrier . J
Neuroinflammation.
2012; ; 9 : :133.. 34.
Graler
MH,
Goetzl
EJ. The
immunosuppressant FTY720 down-regulates sphingosine 1-phosphate
G-protein-coupled receptors . FASEB J.
2004; ; 18 :
:551.–553. 35.
Oo
ML,
Thangada
S,
Wu
MT, et al.
Immunosuppressive and anti-angiogenic sphingosine 1-phosphate
receptor-1 agonists induce ubiquitinylation and proteasomal degradation of
the receptor . J Biol Chem.
2007; ; 282 :
:9082.–9089. 36.
Huwiler
A,
Zangemeister-Wittke
U. The sphingosine
1-phosphate receptor modulator fingolimod as a therapeutic agent: Recent
findings and new perspectives . Pharmacol
Ther.
2018; ; 185 :
:34.–49. 37.
Sanna
MG,
Vincent
KP,
Repetto
E, et al.
Bitopic sphingosine 1-phosphate receptor 3 (S1P3) antagonist
rescue from complete heart block: pharmacological and genetic evidence for
direct S1P3 regulation of mouse cardiac conduction .
Mol Pharmacol.
2016; ; 89 :
:176.–186. 38.
Kremer
D,
Gottle
P,
Flores-Rivera
J, et al.
Remyelination in multiple sclerosis: from concept to clinical
trials . Curr Opin Neurol.
2019; ; 32 :
:378.–384. 39.
Sun
L,
Telles
E,
Karl
M, et al.
Loss of HDAC11 ameliorates clinical symptoms in a multiple
sclerosis mouse model . Life Sci Alliance.
2018; ; 1 :
:e201800039.. 40.
Mi
S,
Miller
RH,
Lee
X, et al.
LINGO-1 negatively regulates myelination by
oligodendrocytes . Nat Neurosci.
2005; ; 8 :
:745.–751. 41.
Cadavid
D,
Balcer
L,
Galetta
S, et al.
Safety and efficacy of opicinumab in acute optic neuritis
(RENEW): a randomised, placebo-controlled, phase 2 trial .
Lancet Neurol.
2017; ; 16 :
:189.–199. 42.
Cadavid
D,
Mellion
M,
Hupperts
R, et al.
Safety and efficacy of opicinumab in patients with relapsing
multiple sclerosis (SYNERGY): a randomised, placebo-controlled, phase 2
trial . Lancet Neurol.
2019; ; 18 :
:845.–856. 43.
Green
AJ,
Gelfand
JM,
Cree
BA, et al.
Clemastine fumarate as a remyelinating therapy for multiple
sclerosis (ReBUILD): a randomised, controlled, double-blind, crossover
trial . Lancet.
2017; ; 390 :
:2481.–2489. 44.
Bordet
R,
Camu
W, De
Seze
J, et al. Mechanism
of action of s1p receptor modulators in multiple sclerosis: the double
requirement.
Rev Neurol (Paris).
2019; Nov 19.
pii: S0035–3787(18)30499–5.. 45.
Jackson
SJ,
Giovannoni
G,
Baker
D. Fingolimod
modulates microglial activation to augment markers of
remyelination . J Neuroinflammation.
2011; ; 8 : :76.. 46.
Szepanowski
F,
Derksen
A,
Steiner
I, et al.
Fingolimod promotes peripheral nerve regeneration via modulation
of lysophospholipid signaling . J
Neuroinflammation.
2016; ; 13 : :143.. 47.
Kim
HJ,
Miron
VE,
Dukala
D, et al.
Neurobiological effects of sphingosine 1-phosphate receptor
modulation in the cuprizone model . FASEB J.
2011; ; 25 :
:1509.–1518. 48.
Gentile
A,
Musella
A,
Bullitta
S, et al.
Siponimod (BAF312) prevents synaptic neurodegeneration in
experimental multiple sclerosis . J
Neuroinflammation.
2016; ; 13 : :207.. 49.
Sedel
F,
Papeix
C,
Bellanger
A, et al.
High doses of biotin in chronic progressive multiple sclerosis: a
pilot study . Mult Scler Relat Disord.
2015; ; 4 :
:159.–169. 50.
Cuascut
FX,
Hutton
GJ. Stem cell-based
therapies for multiple sclerosis: current perspectives .
Biomedicines.
2019;; 7. 51.
Burt
RK,
Balabanov
R,
Burman
J, et al.
Effect of nonmyeloablative hematopoietic stem cell
transplantation vs continued disease-modifying therapy on disease
progression in patients with relapsing-remitting multiple sclerosis: a
randomized clinical trial . Jama.
2019; ; 321 :
:165.–174. 52.
Kvistad
SAS,
Lehmann
AK,
Trovik
LH, et al.
Safety and efficacy of autologous hematopoietic stem cell
transplantation for multiple sclerosis in Norway .
Mult Scler.
2019; ; 1352458519893926 : 53.
Muraro
PA,
Pasquini
M,
Atkins
HL, et al.
Long-term outcomes after autologous hematopoietic stem cell
transplantation for multiple sclerosis . JAMA
Neurol.
2017; ; 74 :
:459.–469. 54.
Mansoor
SR,
Zabihi
E,
Ghasemi-Kasman
M. The potential use
of mesenchymal stem cells for the treatment of multiple
sclerosis . Life Sci.
2019; ; 235 :
:116830.. |